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在单细胞测序及类器官构建等实验领域，高质量的单细胞悬液是实验成功的基石。然而，科研工作者却常常面临一个关键的技术瓶颈：悬液活率偏低。这一现象不仅直接影响了下游数据的可靠性与细胞功能，更可能导致整个研究项目的延误与资源浪费。活率偏低的根源复杂多元，可能贯穿于样本获取、组织解离、细胞过滤乃至保存的全流程。那究竟是酶解方案的过度消化，还是机械操作的物理损伤？是溶液渗透压的失衡，还是细胞凋亡的失控呢？
单细胞悬液活率偏低的关键影响因素：
1.消化酶的选择与适配性
消化酶是解离组织、获得单细胞的核心试剂，其性能直接决定细胞活率。若消化酶活性不足，组织难以充分解离，残留的细胞团会干扰细胞活性检测，同时未完全分离的细胞也可能因营养交换受阻而失活；若消化酶活性过强，则容易破坏细胞细胞膜结构，导致细胞不可逆损伤，直接造成活率下降。因此，针对不同实验样本选择适配的组织单细胞解离酶，是保障细胞活率的首要前提。
2.消化时间的精准把控
细胞离体后，其活性会随时间推移逐渐下降，消化时间的把控需兼顾 “充分解离” 与 “减少损伤”。消化时间过短，组织未能完全分散为单细胞，细胞团残留会影响活率检测结果，实际有效活细胞数量也会减少；消化时间过长，细胞在酶解液中暴露过久，细胞膜易受损伤，同时离体环境下的营养匮乏、代谢紊乱会加剧细胞死亡。需要通过预实验探究特定样本的最佳消化时长，在短时间内完成高效解离。
3.样本取材与处理的规范性
01.组织类型与取材部位：神经、胰腺等组织的细胞间连接紧密，且细胞本身较为脆弱，分离过程中易受机械损伤；若组织存在损伤区域，需避开该部位取材，避免受损细胞影响整体活率。
02.组织预处理：对于血液含量较高的组织，需进行多次清洗以去除表面粘连的红细胞；若制备后仍有大量红细胞残留，需进行裂红处理，防止红细胞碎片干扰细胞活率检测结果。
03.样本保存与运输：样本保存时间过长、储存温度不适宜（过高或过低），或运输过程中出现剧烈震荡，都会导致细胞缺氧、代谢异常，进而造成活性显著下降。
4.操作环境与人为因素
01.无菌操作：操作过程中若出现微生物污染，污染物会与细胞竞争营养物质，同时产生有毒代谢产物，直接导致细胞死亡。
02.操作熟练度：操作人员技术不熟练，会增加细胞在体外的暴露时间，同时可能因机械操作不当（如反复吹打过度）造成细胞损伤，影响活率。
高效制备解决方案：上海净信单细胞悬液制备仪+酶离者组织单细胞解离酶
为解决单细胞悬液活率偏低的实验痛点，上海净信推出了单细胞悬液制备仪，搭配酶离者专用的组织消化酶试剂盒，通过科学优化的方案可显著提升制备质量。
1.核心优势：
01.精准适配的消化酶：配套专用的组织单细胞解离酶试剂盒，针对不同实验样本(如脾脏、肺、肝、胰腺等)选择适合的消化酶，避免消化不足或过度损伤，从源头保障细胞活性。
02.优化的实验程序：净信单细胞悬液制备仪的运行程序均经过大量实验验证，精准匹配最佳消化时间与转速参数，兼顾细胞解离效率与活性保护，同时提高单细胞得率。
2.两款机型灵活选择：
01.JX-DLDXB 款单细胞悬液制备仪：适合处理量大的实验需求，每个管道可独立运行，满足批量样本的高效制备；
02.JX-CKSM 款单细胞悬液制备仪：适合临床穿刺等小样本处理，每管处理量少但支持批量操作，适配临床实验场景。
单细胞悬液制备仪+酶离者组织单细胞解离酶应用的实测案例验证：
1.小鼠脾脏单细胞悬液制备：采用台盼蓝染色、细胞计数仪计数，细胞活率高达99%，细胞形态完好，重复3次实验均获得 1×10⁸次方的高得率（数据来源：南开大学生命科学学院）。
2.小鼠肺单细胞悬液制备：经染色、流式分析，细胞活率达 98.67%，解离效果均匀，无明显细胞团残留。
3.小鼠肝单细胞悬液制备：台盼蓝染色后，细胞计数仪检测显示细胞形态完整，活率表现优异。
上海净信单细胞悬液制备仪通过标准化的操作流程、适配的组织单细胞解离酶与优化的运行参数，有效规避了传统制备过程中影响细胞活率的各类问题，大幅提升实验效率与数据可靠性，为单细胞测序、流式分析等后续实验提供稳定的样本保障。
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